• เฟสบุ๊ค
  • เชื่อมโยงใน
  • ยูทูบ
page_banner

Escherichia Coli O157: ชุดตรวจหากรดนิวคลีอิก H7 (วิธี PCR Fluorescent Probe/Lyophilization)

คำอธิบายชุด:

Cat.No.FP103

 

ใช้สำหรับตรวจจับและคัดกรอง E. coli O157:H7 อย่างรวดเร็วในอาหาร อาหารสัตว์ ตัวอย่างน้ำ และตัวอย่างสิ่งแวดล้อม

ความแข็งแรงของบรรพบุรุษ


รายละเอียดผลิตภัณฑ์

แท็กสินค้า

คำถามที่พบบ่อย

ดาวน์โหลดทรัพยากร

คำอธิบาย

ใช้สำหรับการตรวจจับและคัดกรองอย่างรวดเร็วของ E. coli O157:H7 ในอาหาร อาหารสัตว์ ตัวอย่างน้ำ และตัวอย่างสิ่งแวดล้อม

[หลักการทดสอบ]

ตามหลักการของเทคโนโลยี fluorescent PCR ไพรเมอร์เฉพาะและโพรบ Taqman ได้รับการออกแบบมาสำหรับยีนเฉพาะของ Escherichia coli O157: H7 และตรวจพบโดยเครื่องมือ PCR เรืองแสง เพื่อให้ตรวจพบ Escherichia coli O157: H7 การตรวจหา DNA ในเชิงคุณภาพ

 

เนื้อหาชุด

หมายเหตุ: ไม่รวมโพรบช่อง ROX

Cส่วนประกอบ

ข้อมูลจำเพาะ

Qมากมาย

บัฟเฟอร์ ก

หลอด

1

บัฟเฟอร์บี

หลอด

1

การควบคุมเชิงบวก

หลอด

1

การควบคุมเชิงลบ

หลอด

1

การใช้งานที่คาดหวัง

ใช้สำหรับ การตรวจจับและคัดกรองอย่างรวดเร็วของ E. coli O157:H7 ในอาหาร อาหารสัตว์ ตัวอย่างน้ำ และตัวอย่างสิ่งแวดล้อม

เงื่อนไขการจัดเก็บและวันหมดอายุ

เก็บที่อุณหภูมิ -20 ℃ ในที่มืด และหลีกเลี่ยงการแช่แข็งและการละลายซ้ำ

ระยะเวลาที่ใช้ได้คือ 12เดือนและแสดงวันที่ผลิตบนบรรจุภัณฑ์ด้านนอก

เครื่องมือและอุปกรณ์สิ้นเปลือง

เครื่องมือ PCR เชิงปริมาณเรืองแสง, ปืนปิเปตและเคล็ดลับการจับคู่, เครื่องเขย่าน้ำวน, เครื่องหมุนเหวี่ยงขนาดเล็ก

การใช้งาน

1. การประมวลผลตัวอย่าง

1.1 ประเภทตัวอย่าง: ชุดนี้เหมาะสำหรับตัวอย่างอาหาร อาหารสัตว์ น้ำ และตัวอย่างอื่นๆ ที่สงสัยว่าจะปนเปื้อนเชื้อ Escherichia coli O157:H7สำหรับผลิตภัณฑ์เนื้อสัตว์แปรรูป เครื่องดื่ม และสารอื่นๆ ที่มีเม็ดสี จำเป็นต้องล้างเพื่อหลีกเลี่ยงการส่งผลกระทบต่อการรวบรวมสัญญาณเรืองแสง

1.2 การประมวลผลตัวอย่าง: อ้างอิงถึง "GB 4789.10-2016 Food Safety National Standard Food Microbiological Examination of Escherichia coli O157: H7 Test" สำหรับการเตรียมตัวอย่าง การเพิ่มคุณค่าวัฒนธรรม และการแยกเชื้อ Escherichia coli O157: H7

  1. Nการสกัดกรดยูคลีอิก

ใช้สารละลายเพิ่มคุณค่า 20 มล. ในหลอดปั่นแยกขนาด 1.5 มล. เติมจุลินทรีย์ไลเสต 200 ไมโครลิตร (ต้องใช้ชุดอุปกรณ์เพิ่มเติม) น้ำวนเป็นเวลา 30 วินาที ปั่นแยกเป็นเวลาสั้นๆ แล้วพักไว้

ข้อสังเกต: การสกัดกรดนิวคลีอิกจากไลเสตควรเสร็จสิ้นภายใน 10 นาที และไม่สามารถเก็บไว้ได้นาน

3. การขยายกรดนิวคลีอิก

3.1 เปิดเครื่อง PCR เชิงปริมาณเรืองแสงเพื่อใช้งาน

บัฟเฟอร์ A และบัฟเฟอร์ B จากชุดอุปกรณ์ ละลายให้ละเอียด แล้วปั่นแยกเป็นเวลาสั้นๆเติมบัฟเฟอร์ A 18 ไมโครลิตร และบัฟเฟอร์ B 2 ไมโครลิตร ลงในหลอดปฏิกิริยา PCR แต่ละหลอดจากนั้นเติมกลุ่มควบคุมเชิงลบ กรดนิวคลีอิกที่แยกออกมา และกลุ่มควบคุมเชิงบวกอย่างละ 5 มล. ลงในหลอดปฏิกิริยา PCR ปิดฝาหลอด และปั่นแยกเป็นเวลาสั้นๆ

3.3 ย้ายท่อปฏิกิริยา PCR ไปยังเครื่อง PCR เรืองแสง และใช้ขั้นตอนต่อไปนี้เพื่อทำการทดลองขยายสัญญาณ: เลือก 25 มล. สำหรับระบบปฏิกิริยา รวบรวมสัญญาณเรืองแสงที่ 60°C สำหรับแต่ละรอบ และเลือก FAM สำหรับช่องตรวจจับ

ขั้นตอนที่

โปรแกรม

จำนวนรอบ

1

37℃ 5 นาที

1

2

9 5 ℃ 3 นาที

1

3

95°ซ 15 วินาที

4 0

60 ℃ 30 วินาที (รวบรวมสารเรืองแสง)

 


  • ก่อนหน้า:
  • ต่อไป:

  • แนวทางการวิเคราะห์ปัญหา

    The following is an analysis of the problems that might be encountered in the extraction of viral RNA. We wish it would be helpful to your experiment. In addition, for other experimental or technical problems other than operating instructions and problem analysis, we have dedicated technical support to help you. Contact us if you need at : 028-83361257or E-mail:Tech@foregene.com。

     

    ไม่สามารถสกัด RNA ได้หรือผลผลิตของกรดนิวคลีอิกต่ำ

    โดยปกติแล้วมีหลายปัจจัยที่ส่งผลต่อประสิทธิภาพการกู้คืน เช่น เนื้อหา RNA ตัวอย่าง วิธีการดำเนินการ ปริมาณการชะล้าง เป็นต้น。

    การวิเคราะห์สาเหตุทั่วไป:

    1. อ่างน้ำแข็งหรือการหมุนเหวี่ยงที่อุณหภูมิต่ำ (4 ° C) ระหว่างการทำงาน

    คำแนะนำ: การทำงานที่อุณหภูมิห้อง (15-25 ° C) ห้ามแช่น้ำแข็งและหมุนเหวี่ยงอุณหภูมิต่ำ

    2. การเก็บตัวอย่างที่ไม่เหมาะสมหรือเก็บตัวอย่างไว้นานเกินไป

    คำแนะนำ: เก็บตัวอย่างที่อุณหภูมิ -80 °C หรือแช่แข็งในไนโตรเจนเหลว และหลีกเลี่ยงการใช้น้ำแข็งละลายซ้ำๆพยายามใช้ตัวอย่างที่เก็บใหม่สำหรับการสกัด RNA

    3. การสลายตัวอย่างไม่เพียงพอ

    คำแนะนำ: โปรดตรวจสอบให้แน่ใจว่าได้ผสมตัวอย่างและสารละลายทำงาน (ลิเนียร์อะคริลาไมด์) อย่างทั่วถึงและบ่มเป็นเวลา 10 นาทีที่อุณหภูมิห้อง (15-25 ° C)

    4.เติมสารชะล้างไม่ถูกต้อง

    คำแนะนำ: ตรวจสอบให้แน่ใจว่าได้เพิ่ม ddH2O ที่ปราศจาก RNase ที่กึ่งกลางของเมมเบรนของคอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์

    5.ปริมาณแอนไฮดรัสเอทานอลในบัฟเฟอร์ viRW2 ที่ไม่เหมาะสม

    คำแนะนำ: โปรดปฏิบัติตามคำแนะนำ เติมเอทานอลปราศจากน้ำในปริมาณที่ถูกต้องลงใน Buffer viRW2 และผสมให้เข้ากันก่อนใช้ชุด。

    6. การใช้ตัวอย่างที่ไม่เหมาะสม

    คำแนะนำ: ตัวอย่าง 200µl ต่อ 500µl ของ Buffer viRLปริมาณตัวอย่างที่มากเกินไปจะส่งผลให้อัตราการสกัด RNA ลดลง

    7.ปริมาณการชะที่ไม่เหมาะสมหรือการชะที่ไม่สมบูรณ์

    คำแนะนำ: ปริมาตรชะล้างของคอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์คือ 30-50μl;หากผลการชะไม่เป็นที่พอใจ แนะนำให้เติม RNase-Free ddH ที่อุ่นไว้ล่วงหน้า2O และยืดเวลาการวางที่อุณหภูมิห้อง เช่น 5-10 นาที

    8.คอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์มีเอธานอลตกค้างหลังจากล้างใน Buffer viRW2

    คำแนะนำ: หากเอทานอลยังคงอยู่หลังจากล้างใน Buffer viRW2 และการปั่นแยกด้วยหลอดเปล่าเป็นเวลา 2 นาที คอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์สามารถทิ้งไว้ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 5 นาทีหลังจากการปั่นแยกด้วยหลอดเปล่าเพื่อกำจัดเอทานอลที่เหลืออยู่ให้หมด

     

    การสลายตัวของโมเลกุล RNA ที่บริสุทธิ์

    คุณภาพของ RNA ที่บริสุทธิ์เกี่ยวข้องกับปัจจัยต่างๆ เช่น การเก็บตัวอย่าง การปนเปื้อนของ RNase และการทำงาน

    การวิเคราะห์สาเหตุทั่วไป:

    1.เก็บตัวอย่างไม่ทันเวลา

    คำแนะนำ: หากตัวอย่างไม่ได้ใช้หลังการเก็บ โปรดเก็บไว้ที่อุณหภูมิ -80 ℃ หรือไนโตรเจนเหลวทันทีสำหรับการสกัดโมเลกุล RNA พยายามใช้ตัวอย่างที่เก็บมาใหม่ทุกครั้งที่ทำได้

    2. เก็บตัวอย่างแช่แข็งและละลายซ้ำ

    คำแนะนำ: หลีกเลี่ยงการแช่แข็งและละลายซ้ำ (ไม่เกิน 1 ครั้ง) ระหว่างการเก็บตัวอย่างและการเก็บรักษา มิฉะนั้น ผลผลิตของกรดนิวคลีอิกจะลดลง

    3.RNase ถูกนำมาใช้ในห้องผ่าตัดหรือไม่มีการสวมถุงมือ หน้ากาก ฯลฯ แบบใช้แล้วทิ้ง

    คำแนะนำ: การทดลองสกัดโมเลกุล RNA ทำได้ดีที่สุดในห้องผ่าตัด RNA ที่แยกจากกัน และทำความสะอาดโต๊ะทดลองก่อนการทดลองสวมถุงมือและหน้ากากแบบใช้แล้วทิ้งในระหว่างการทดลองเพื่อหลีกเลี่ยงการย่อยสลาย RNA ที่เกิดจากการนำ RNase

    4. น้ำยาถูกปนเปื้อนโดย RNase ระหว่างการใช้งาน

    คำแนะนำ: แทนที่ด้วย Viral RNA Isolation Kit ใหม่สำหรับการทดลองที่เกี่ยวข้อง

    5.การปนเปื้อน RNase ของท่อปั่นแยก ทิปปิเปต ฯลฯ คำแนะนำ: ตรวจสอบให้แน่ใจว่าท่อปั่นแยก ทิปปิเปต และปิเปตทั้งหมดปลอดสาร RNase

     

    โมเลกุล RNA ที่บริสุทธิ์ส่งผลต่อการทดลองขั้นปลาย

    โมเลกุล RNA ที่ทำให้บริสุทธิ์โดยคอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์จะส่งผลต่อการทดลองขั้นปลายหากมีไอออนของเกลือหรือโปรตีนมากเกินไป เช่น: การถอดความแบบย้อนกลับ, Northern Blot เป็นต้น。

    1. มีเกลือไอออนเหลืออยู่ในโมเลกุล RNA ที่ถูกชะออก

    คำแนะนำ: ตรวจสอบให้แน่ใจว่าได้เติมเอธานอลปราศจากน้ำในปริมาตรที่ถูกต้องใน Buffer viRW2 แล้ว และล้างคอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์สองครั้งตามความเร็วการหมุนเหวี่ยงที่ถูกต้องในคู่มือการใช้งาน ถ้ายังมีเกลือไอออนเหลืออยู่ คุณสามารถเพิ่ม Buffer viRW2 ลงในคอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์ และทิ้งไว้ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 5 นาทีจากนั้นทำการปั่นแยกเพื่อขจัดการปนเปื้อนของไอออนเกลือออกให้มากที่สุด

    2. มีเอธานอลเหลืออยู่ในโมเลกุล RNA ที่ถูกชะออก

    คำแนะนำ: เมื่อยืนยันว่าคอลัมน์การทำให้บริสุทธิ์ได้รับการล้างด้วย Buffer viRW2 แล้ว ให้ทำการปั่นเหวี่ยงท่อเปล่าตามความเร็วการหมุนเหวี่ยงในคู่มือการใช้งานหากยังมีเอทานอลเหลืออยู่ สามารถทิ้งไว้ 5 นาทีที่อุณหภูมิห้องหลังจากการปั่นแยกด้วยหลอดเปล่าเพื่อกำจัดเอทานอลที่เหลืออยู่ให้ได้มากที่สุด

    คู่มือการใช้งาน:

    คู่มือการใช้งานชุดแยก Viral RNA

     

    เขียนข้อความของคุณที่นี่และส่งถึงเรา